Sep 18, 2024

Public workspaceВыделение, пробоподготовка и секвенирование тотальной ДНК грибов на Nanopore MinION V.1

DOI
https://dx.doi.org/10.17504/protocols.io.kxygx3jwkg8j/v1
Выделение, пробоподготовка и секвенирование тотальной ДНК грибов на Nanopore MinION
  • Elena Zvyagina1,
  • Nina Filippova1
  • 1Yugra State University
Nina Filippova
Icon indicating open access to content
QR code linking to this content
DOI: https://dx.doi.org/10.17504/protocols.io.kxygx3jwkg8j/v1
Protocol Citation: Elena Zvyagina, Nina Filippova 2024. Выделение, пробоподготовка и секвенирование тотальной ДНК грибов на Nanopore MinION. protocols.io https://dx.doi.org/10.17504/protocols.io.kxygx3jwkg8j/v1
License: This is an open access protocol distributed under the terms of the Creative Commons Attribution License,  which permits unrestricted use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original author and source are credited
Protocol status: In development
We are still developing and optimizing this protocol
Created: February 27, 2024
Last Modified: September 18, 2024
Protocol Integer ID: 95808
Keywords: metabarcoding, fungi, ITS, bog, на nanopore minion, nanopore minion platform, размещенных на сайте nanopore, nanopore website, nanopore, nanopore website to russian, total fungal dna, molecular genetic methods in biodiversity study, dna extraction method, dna extraction, molecular genetic method, laboratory, biodiversity study, native barcoding kit, native barcoding kit 24 v14, sample preparation, dna
Funders Acknowledgements:
Yugra State University
Grant ID: 075-ГЗ/X4144/854/4
Disclaimer
Данный протокол составлен на основе собственного опыта использования различных компонентов и протоколов. Все рекомендации, приведенные в нем Вы можете использовать без каких-либо гарантий.
Abstract
[EN] Protocols for sampling, sample preparation, and sequencing on the Nanopore MinION platform. The target material is total fungal DNA (amplicons) from soil and other substrates. This protocol includes the sampling conditions and DNA extraction methods for metabarcoding tasks, as well as a more or less literal translation of the protocol for the Native Barcoding Kit 24 V14 (SQK-NBD114.24) and the instructions provided on the Nanopore website to Russian. The text has been supplemented with the experience of the laboratory "Molecular Genetic Methods in Biodiversity Studies" in the context of our research objectives.

[RU] Протоколы отбора, подготовки проб и секвенирования на платформе Nanopore MinION. В качестве объекта используется тотальная ДНК (ампликоны) грибов из почвы и других субстратов. Данный протокол содержит условия отбора проб и выделения ДНК для задач метабаркодинга, а также более или менее дословный перевод протокола для Native Barcoding Kit 24 V14 (SQK-NBD114.24) и инструкций, размещенных на сайте Nanopore. Текст был дополнен опытом работы лаборатории "Молекулярно-генетических методов в изучении биоразнообразия" в рамках наших исследовательских задач.
Materials
Основные наборы реактивов, использованные для выделения ДНК и последующей подготовки библиотек
Protocol materials
ReagentHiPure Soil DNA KitMagen Biotechnology Co., LtdCatalog #D314202
ReagentВыделение ДНК/РНК из почвы на магнитных частицах SileksMagNASileksCatalog #KIRSL0100
ReagentQubit dsDNA HS Assay KitThermo Fisher ScientificCatalog #Q32851
ReagentNEBNext FFPE DNA Repair MixNew England BiolabsCatalog #M6630
ReagentNEBNext Ultra II End repair/dA-tailing ModuleNew England BiolabsCatalog #E7546
ReagentNEB Blunt/TA Ligase Master MixNew England BiolabsCatalog #M0367
ReagentNEBNext Quick Ligation ModuleNew England BiolabsCatalog #E6056
ReagentAMPure XP Beads (AXP)Beckman CoulterCatalog #AXP
ReagentNative Barcoding Kit 24 V14 (SQK-NBD114.24)Oxford Nanopore TechnologiesCatalog #SQK-NBD114.24
ReagentEDTA disodium dihydrateAbblisCatalog #AB1011793
ReagentNEB Blunt/TA Ligase Master Mix (M0367)
Troubleshooting
Safety warnings
При отборе проб на стационаре Мухрино необходимо передвигаться по установленным мосткам.
При отборе проб на постоянных пробных площадках необходимо придерживаться площадки и не выходить за ее пределы.
Ethics statement
Для использования протокола не требуется предварительного согласования с этическими коммитетами
Отбор проб, консервация и хранение
Для изучения состава и структуры сообщества грибов лесных и болотных почв, отбор проб проводится на репрезентативных участках в основных типах местообитаний. Оптимально, если на тех же участках проводилась ревизия видового состава классическим методом (наблюдение плодовых тел или выделение в культуру). В нашем случае, отбор проб ведется на площадках многолетнего мониторинга в окр. пос. Шапша и на стационаре Мухрино ЮГУ. Схема организации постоянных учетных площадей опубликована нами ранее в протоколе Sampling macrofungi using fixed-sized plots.

Пример отбора проб на площадках в биотопе хвойного леса в окрестностях пос. Шапша. На схеме слева показано размещение 4х площадок (внутри каждой по 1 или 2 линии микро-площадок). Площадка 1 увеличена во вкладке снизу, чтобы показать линии микро-площадок (всего 40 шт). Схема справа показывает фрагмент размещения круглых микро-площадок относительно друг друга. Отбор проводится в каждой второй микро-площадке, так что расстояние между пробами составляет 10 м, всего 5 проб на одной площадке.

В зависимости от выбранного биотопа, определяется тип субстрата для отбора проб, глубина и другие параметры среды, значимые для сообщества. Например, для изучения сообществ грибов лесов, мы отбираем пробы в двух горизонтах почвы: подстилка и лежащий под ней гумусовый горизонт. На сфагновых болотах отбор проб торфа происходит с разных глубин: от поверхности до глубоких слоев торфяной залежи, в зависимости от задачи. Отдельной задачей может являться отбор микоризных окончаний растений; отбор опада листьев разных растений, и др.
Отбор проб почвы, подстилки или торфа

Для работы в поле потребуются следующие инструменты:
ABC
ИнструментКол-воПримечание
Рулон стерильной фольги1Простерилизовать в автоклаве или сушильном шкафу накануне отбора проб. Фольга может использоваться для заворачивания проб (особенно, если почва очень влажная). Альтернативой являются бумажные пакеты или зип-пакеты. Можно завернуть пробу в фольгу, а затем для прочности положить в зип-пакет.
Стерильные бумажные конвертыnКонверты из пергаментной бумаги. Удобно делать пакет с четырьмя сгибами, так что его легко можно открыть и достать образец. Пакеты изготавливают заранее, складывают пачками, заворачивают в отдельный лист бумаги, и стерилизуют в автоклаве накануне отбора проб.
Зип-пакетыnЗип-пакеты можно использовать для дополнительной упаковки конвертов из бумаги или фольги, а также упаковки серии проб (большие пакеты) с одной площадки.
Перманентный маркер2Маркер используется для нумерации конвертов с пробами, а также пакетов с серией проб с одной площадки.
Пульвелизатор с перекисью водорода1Перекись является наиболее безопасным средством стерилизации. Можно обрабатывать перчатки и нож между отбором. Лучше протереть инструмент влажной салфеткой, а затем обработать перекисью, и дать стечь излишней влаге перед отбором.
Перчатки1Для избежания контаминации проб микробиотой кожи, отбор проб ведется в перчатках. Между пробами перчатки обрабатывают перекисью водорода.
Сумка-холодильник с хладагентом для проб1Для сохранения интактного сообщества в отобранных пробах, важно организовать временное хранилище во время транспортировки, в котором поддерживается стабильная прохладная температура.
Блокнот и карандаш, или другое устройство для записей1В полевом журнале важно отмечать для каждой пробы: место, время и субстрат.
Инструменты для определения физико-химических параметров почвыnВажно запланировать заранее параметры среды, которые будут измеряться в поле, например: pH, электропроводность, температура и др.
GPS или другое устройство для определения координат1GPS или телефон с включенным геопозиционирование используется для геопривязки каждой извлеченной пробы.


На площадке выбирается от 3 до 5 точек, расположенных равноудаленно друг от друга.
В каждой точке ножом или большой ложкой отбирается равный объем (вес или объем может определяться условиями эксперимента) субстрата. Вынутый из трех-пяти точек субстрат складывается в общий конверт (таким образом обеспечивается охват разнообразных микро-условий в пределах одной площадки). Если отбор ведется с разных глубин, то отбор повторяется несколько раз на разных глубинах. Конверт подписывают номером площадки, микро-площадки и типом субстрата. Во время полевой работы образцы в конвертах хранят в сумке с хладагентом.
В лаборатории образцы помещают на длительное хранение в морозильную камеру. Перед отправкой в морозильную камеру, нужно убедиться в надежности этикеток на конвертах и общих пакетах. Перед началом выделения тотальной ДНК пробы размораживают и сушат, подвергают лиофильной сушке, или выделяют из мокрого состояния, в зависимости выбранной стратегии.
Альтернативным способом заморозке является лиофильная сушка. Пробы упаковывают в бумажные (пергаментные) пакеты и помещают в камеру лиофильной сушилки, где происходит сначала их заморозка до Temperature-40 °C , а затем возгонка воды в вакууме. Процесс сушки может занять до нескольких суток, в зависимости от объема.


Пример сушки образцов почвы в лиофилизаторе (на верхней полке в бумажных конвертах)


2d
Еще один альтернативный способ - консервация сушкой в термошкафу. Образцы помещают в стерильные бумажные конверты (или собирают пробы сразу в них) и сушат при температуре до Temperature40 °C в течении двух суток.

2d
Подготовка проб почвы для выделения тотальной ДНК
Выделение тотальной ДНК ведется из небольших объемов субстрата (в стандартных наборах для выделения Amount500 mg ), что может препятствовать полноценному отбору всего сообщества и гомогенности его распределения. Альтернативным способом является вымывание внеклеточной тотальной ДНК с помощью фосфатного буфера (Taberlet et al., 2018) или использование специальных наборов для увеличенного объема субстрата. Если используется стандартная навеска Amount500 mg , важно на этапе подготовки пробы к выделению обеспечить гомогенизацию и измельчение отобранного субстрата, чтобы обеспечить максимально равномерный охват сообщества.
Citation
Taberlet, P., Bonin, A., Zinger, L., & Coissac, E. (2018). Environmental DNA: For biodiversity research and monitoring.
https://doi.org/10.1093/oso/9780198767220.001.0001
LINK


Оборудование:
Гомогенизатор со сменными стаканами объемом 250 мл
Увлажнитель воздуха или гепа-фильтр
Пинцет большой
Спиртовка или инфракрасный стерилизатор

Материалы:
Фольга в рулоне
Спирт
Перекись водорода
Перчатки
Карандаш
Пробирки 1,5 мл
Ершик для промывания стакана

Note
Работу проводят в маске и с использованием увлажнителя воздуха или гепа-фильтра, поскольку при измельчении в воздух попадает тонкодисперсная пыль

Подготавливаются поверхность для работы: стол стерилизуют, рядом включают фильтр или увлажнитель, ставят корзину для мусора и лоток с образцами, подготавливают раковину для мытья стаканов; на соседнем столе располагают штатив с пробирками, пинцет и стерилизатор
Сухой образец почвы, подстилки или торфа помещают в стакан гомогенизатора, накрывают стерильным куском фольги (чтобы избежать сильного пыления), закрывают крышкой и измельчают до образования пыли. После остановки ждут несколько секунд для оседания пыли. Пробу пересыпают в тот же конверт или заворачивают в кусок фольги, подписывают номером образца и складывают в лоток.
Стакан гомогенизатора промывают под проточной водой с использованием ершика, стерилизуют перекисью водорода, и высушивают с помощью чистой бумажной салфетки и спирта. Процедуру повторяют со следующим образцом. При наличии нескольких стаканов удобно работать в паре (один человек занимается измельчением, другой чисткой и стерилизацией стаканов).
Образцы с измельченной до пылеватого состояния пробой переносят в микропробирки. Для этого на чистой поверхности стерильным узким шпателем из нескольких мест пробы отбирается объем (около 500 мг). Шпатель стерилизуется между образцами. Можно использовать стерильные носики, отбирая гомогенизат обратной стороной 5-10 раз. Пробирки подписывают номерами проб и хранят в замороженном виде до выделения.

Результат измельчения проб почвы и подстилки, собранных на площадках в лесных экосистемах: А. образец подстилки и почвы в пробирках. B. Пример образцов опилок и почвы, подготовленных для выделения.

Альтернативными вариантами измельчения и гомогенизации разных субстратов может быть использование ступок и пестиков, а для древесных субстратов использование дрели (приготовление опилок). На рисунках показаны этапы измельчения, гомогенизации и отбора проб разных субстратов для метабаркодинга подстилки, торфа и древесины соответственно.


Приготовление субстрата для выделения из древесины: А. очистка древесины от внешнего мусора. B, C. высверливание опилок из древесины. D. отбор пробы в пробирки.

Приготовление субстрата для выделения из торфа. A. Образец, подвергнутый лиофильной сушке. B. Гомогенизация в ступке. C. Образцы в пробирках.

Приготовление субстрата для выделения из опада растений. A. Субстрат листьев Er. vaginatum в стакане гомогенизатора. B. Образец после измельчения. C. Образцы в пробирках.


Выделение тотальной ДНК
Выделению тотальной ДНК должна предшествовать гомогенизация субстрата на микро-уровне (разрушение тканей и клеточных стенок) физическим и химическим путем. В зависимости от плотности структур, могут использоваться следующие параметры:
  1. Предварительное замачивание в лизис-буфере на несколько часов (с нагревом на термостате при Temperature60 °C )
  2. Гомогенизация микро-пестиком в микро-пробирке вручную или с использованием ручного гомогенизатора. К субстрату могут быть добавлены измельчающие частицы (шарики), согласно инструкциям в наборе для выделения.
  3. Гомогенизация с использованием шариков в гомогенизаторе.

Оборудование и реактивы:
  • Гомогенизатор ручной для микро-пробирок
  • Гомогенизатор для микропробирок на 24 пробирки
  • Микро-пестики для микропробирок
  • Термостат

ReagentHiPure Soil DNA KitMagen Biotechnology Co., LtdCatalog #D314202
ReagentВыделение ДНК/РНК из почвы на магнитных частицах SileksMagNASileksCatalog #KIRSL0100

Образцы замачивают в лизис-буфере и оставляют на несколько часов на термостате при Temperature60 °C
В зависимости от субстрата выбирают ручной способ гомогенизации (микро-пестик) или гомогенизатор для микро-пробирок; также выбирают измельчающие частицы или шарики для растирания в пробирке


Note
Эффективность гомогенизации может быть повышена периодическим замораживанием и размораживанием пробирок

Далее выделение ДНК проводят по протоколу производителя набора для выделения. Выделенная ДНК хранится в морозильной камере Temperature-40 °C в микро-пробирках в штативах с маркировкой от нескольких дней до нескольких месяцев.

Подготовка ампликонов
ОБОРУДОВАНИЕ И РЕАКТИВЫ:

Набор для флуориметра:
ReagentQubit dsDNA HS Assay KitThermo Fisher ScientificCatalog #Q32851

Оборудование:
  • Флуориметр Qubit 4.0
  • Амплификатор
  • Центрифуга
  • Микроцентрифуга
  • Вортекс
  • Дозаторы объемов 2, 10, 20, 100, 1000 μl

Расходные материалы:
  • Микропробирки 1.5 мл и 0.2 мл
  • Тонкостенные пробирки на 0.5 мл без делений для измерений концентрации на флуориметре
  • Рабочий раствора для флуориметра Qbit dS DNA HS Kit
  • Наконечники для дозаторов 2, 10, 20, 100, 1000 μl
  • Праймеры
  • Готовая смесь с полимеразой
  • Безнуклеазная вода

Note
Для расчета необходимого объема воды для разбавления спирта можно воспользоваться калькулятором: https://c2h5-oh.ru/calc2

Измерение концентраций выделенной ДНК
1. В тонкостенные пробирки на Amount0.5 mL разлить про Amount198 µL рабочего раствора Qbit dS DNA HS Kit одним наконечником
2. В каждую пробирку добавить Amount2 µL выделенной ДНК разными наконечниками
3. Интенсивно перемешать на вортексе
4. Измерить концентрацию на флуориметре Qubit
5. Внести результаты измерения в базу данных, для последующего расчета нормирования

Нормализация концентраций ДНК
Для нормализации концентрации ДНК во всех пробирках, требуется рассчитать необходимый объем раствора исходной ДНК и воды как показано в таблице:

Note
На реакцию ПЦР требуется около 10-12 ng ДНК в объеме Amount2.5 µL (т.е. концентрация 5 ng/µL). Если концентрация ДНК в образце ниже, то такие образцы на этом этапе удаляют из дальнейшей пробоподготовки. Можно повторить выделение ДНК, используя параметры для увеличения концентрации выделяемой ДНК.




ABCDE
C matr ng/µlV matr = VP X CP / C matrCp ng/µlVp µlVv=Vp-Vmatr
22.921.8=100*5/22.9510078.2=100-21.8
13.038.5=100*5/13.0510061.5=100-13.0
42.311.8=100*5/42.3510088.2=100-42.3
С matr - начальная концентрация ДНК
С р - конечная концентрация ДНК
V matr - объем раствора с начальной концентрацией ДНК
V p - конечный объем раствора
V v - объем воды, который нужно добавить для получения конечной концентрации

Computational step
Подготовьте серию свежих пробирок 0.2 мл по числу проб для нормализованной ДНК. Подпишите маркером номера как на исходных пробирках с ДНК
Переносите последовательно необходимые объемы ДНК и воды в каждую пробирку, пользуясь таблицей с рассчитанными значениями. Для каждой новой пробы ДНК и воды используйте новые носики!

Note
На этом шаге удобно работать в паре: один пипетирует, другой зачитывает значения из таблицы

Постановка ПЦР

Note
Поставьте серию ампликонов (повторности ПЦР для каждой пробирки)
Для компенсации стохастический явлений во время ПЦР и в целях сохранения редких последовательностей, можно ставить от 2 и более повторностей ПЦР для каждого образца. После прохождения реакции перед началом следующего этапа эти дубли сливаются в общую пробирку и перемешиваются.


Для приготовления ПЦР смешать компоненты смеси из расчета на число пробирок:
РеагентКонцентрацияОбъем на пробиркуОбъем на N пробирок !
H2O16,9 μl16 * N
Pr F10 pM0,3 μl0,3 * N
Pr R10 pM0,3 μl0,3 * N
Полимераза5X5 μl5 * N
Образец ДНК5 ng/µl2,5 μl2,5 μl
Всего25 μl
Pr F праймер форвард
Pr R праймер реверс
N число пробирок
! при числе пробирок >=16 необходимо увеличить N на 1 для компенсации ошибки пипетирования
PCR
Подготовьте серию свежих пробирок Amount0.2 mL по числу проб (плюс К+ и К-) и подпишите маркером номера проб

Перенесите по Amount22.5 µL смеси в каждую пробирку одним носиком

Добавьте по Amount2.5 µL нормализованной ДНК в каждую пробирку

Сбросьте капли на центрифуге и установите пробирки в ПЦР машину с параметрами амплификации как в таблице:
Программа амплификации региона ITS1-5.8S-ITS2 грибов
для праймеров ITS1F (Gardes and Bruns, 1993) и ITS4 (White et al., 1990)

ABCDEF
IIIIII
ДенатурацияДенатурацияОтжигЭлонгацияЭлонгацияХранение
95 °C94°C54°C72°C72°C4°C
0:05:000:00:300:10:00бесконечность
1x25x1x∞

Note
Программа ПЦР реакции определяется несколькими параметрами:
1) температура отжига согласно праймерам (примерная формула Tm(°C) = 2 х (A+T) + 4 х (G+C))
2) температура и время денатурации согласно паспорту полимеразы
3) время элонгации согласно длине фрагмента
4) число циклов не более 25 (Tedersoo et al., 2022)


Citation
Gardes M. & Bruns T.D. (1993). ITS primers with enhanced specifity for Basidiomycetes: application to identification of mycorrhizae and rusts. Molecular Ecology 2: 113–118..
https://doi.org/10.1111/j.1365-294X.1993.tb00005.x
LINK

Citation
Tedersoo L, Bahram M, Zinger L, Nilsson RH, Kennedy PG, Yang T, Anslan S, Mikryukov V (1970). Best practices in metabarcoding of fungi: From experimental design to results.
https://doi.org/10.1111/mec.16460
LINK

Citation
White, T.J., Bruns, T.D., Lee, S.B. and Taylor, J.W. (1990). Amplification and Direct Sequencing of Fungal Ribosomal RNA Genes for Phylogenetics. In: Innis, M.A., Gelfand, D.H., Sninsky, J.J. and White, T.J., Eds., PCR Protocols: A Guide to Methods and Applications, Academic Press, New York, 315-322..
http://dx.doi.org/10.1016/B978-0-12-372180-8.50042-1
LINK


Поставьте гель-электрофорез для визуальной оценки результатов ПЦР, в базе данных отметьте положительный и отрицательный результат, а также чистоту контролей
1h
Объедините пцр-продукт из одной пробы ДНК
Для этого в соответствующие пробирки слейте ПЦР продукт из двух или более пробирок с одинаковым номерами (серии ампликонов)
Очистка ампликонов
Оборудование:
  • Центрифуга
  • Магнитный штатив на пробирки Amount1.5 mL
  • Вортекс
  • Дозаторы объемов 2, 10, 20, 100, 1000 μl

Реактивы:
ReagentAMPure XP Beads (AXP)Beckman CoulterCatalog #AXP
  • Безнуклеазная вода
  • Cвежеприготовленный 80% спирт в безнуклеазной воде


Note
Объем приготовленного 80% спирта рассчитывается из следующего:
  • Всего в протоколе 2 этапа очистки отдельных образцов и 1 этап очистки пулированных образцов
  • На очистку отдельных образцов требуется 500 мкл спирта на пробирку на один этап (всего 1000 мкл * число пробирок)
  • На очистку пулированных образцов требуется всего 2000 мкл спирта (независимо от числа проб)
  • Например, для 24 образцов нам понадобится 500*24*2 + 2000 = 26 мл спирта 80%


Note
Регулируйте длину фрагментов селекцией очистки. Для равновероятной очистки всех длин фрагментов используйте соотношение AmPure:DNA 1:1, для увеличения концентрации длинных фрагментов, уменьшайте объем AmPure

Установите на обычный штатив серию пробирок по числу проб и подпишите маркером
В соответствующие пробирки слейте ПЦР продукт из двух или более пробирок с одинаковым номерами (серии ампликонов)
(примечание к след редакции протокола ФНВ: какой должен быть общий общем ПЦР продукта? если взяли несколько серий ампликонов, то затем отбираем только часть общего объема?)
Для очистки ампликонов ITS добавьте 0,8 объема AmPure, тщательно пипетируйте и инкубируйте Duration00:05:00


5m
Установите на магнитный штатив и дождитесь, пока частицы полностью осядут на магнит и раствор станет прозрачным
Отберите супернатант
Добавьте соответствующий объем свежеприготовленного 80% спирта до краев пробирки, отберите и слейте спирт
Повторите предыдущий шаг
Тщательно отберите спирт, сбросьте капли со стенок пробирки на центрифуге
Снова поместите пробирки на магнитный штатив, тонким носиком отберите остатки жидкости
Просушите до Duration00:01:00 , не давайте осадку растрескиваться. Просушенный осадок перестает блестеть

1m
Добавьте Amount20 µL безнуклеазной воды, инкубируйте до Duration00:05:00 для растворения ДНК

5m
Установите пробирки на штатив, дождитесь оседания частиц на магнит
Подготовьте серию чистых пробирок и отберите ДНК в чистую пробирку
Нормализация концентраций ампликонов для подготовки библиотек
Оборудование:
Флуориметр Qubit

Реактивы:
Набор для флуориметра:
ReagentQubit dsDNA HS Assay KitThermo Fisher ScientificCatalog #Q32851

Note
Оптимизация библиотек для дуплекс-бейсколлинга
Для того, чтобы дуплекс-байсколлинг был эффективным необходимо:
1. Следовать протоколу, обеспечивающему успешное лигирование адаптеров к двум концам фрагментов ДНК;
2. Соблюдать рекомендации по степени загрузки ячейки. Недогрузка ячейки приводит к низкому связыванию адаптеров с ячейкой и меньшему выходу секвенирования. Перегрузка увеличивает конкуренцию молекул за пору и снижает вероятность секвенирования обратной цепи.

Образцы с широкой представленностью длин фрагментов, например, геномной ДНК
  • начинают с 1 μg материала для подготовки библиотек с использованием Ligation Sequencing Kit или 400 ng для подготовки библиотек с использованием Rapid Sequencing Kit.
Для библиотек из коротких фрагментов, например, ампликонов или к-ДНК используют 100-200 fmol материала.

Подробный протокол подготовки ДНК к загрузке читайте на сайте Nanopore

Note
В реакцию подготовки библиотек со средней длиной фрагмента 800 bp рекомендуется взять по 200 fMol (Amount100 ng в Amount12.5 µL ) ампликонной ДНК. Для этого концентрацию ДНК каждого ампликона нормализовать до 200 fMol.


Установите на штатив серию пробирок по числу проб и подпишите маркером
Измерьте концентрацию ампликонов на флуориметре Qbit (размерность в ng/μl)
Рассчитайте молярную массу ДНК, воспользовавшись NEBCalculator

Пример расчета молярной массы ДНК в мобильном приложении NEBCalculator

Пример расчета молярной массы ДНК в браузерной версии NEBCalculator

Рассчитайте необходимый объем ДНК ампликонов и воды для подготовки библиотек по таблице:
С amp ng/mklM fmolV(amp) для 200 fmol, mklVH2O, mkl
CMV(amp)=200/MVH2O=12.5-V(amp)
9.6319.5200/19.5=10.312.5-10.3=2.2
8.216.6200/16.6=1212.5-12=0.5
Пример расчета соотношения объемов ДНК ампликонов и воды



Note
поскольку максимальный объем ДНК в реакцию 12.5 mkl, в нем должно быть не менее 200 fmol
пробы с меньшей концентрацией не пригодны для подготовки библиотек

Репарация ДНК и подготовка липких концов
20m
ОБОРУДОВАНИЕ И РЕАКТИВЫ:

Реактивы NEB:
ReagentNEBNext FFPE DNA Repair MixNew England BiolabsCatalog #M6630
ReagentNEBNext Ultra II End repair/dA-tailing ModuleNew England BiolabsCatalog #E7546
ReagentNEB Blunt/TA Ligase Master MixNew England BiolabsCatalog #M0367
ReagentNEBNext Quick Ligation ModuleNew England BiolabsCatalog #E6056
Набор для флуориметра:
ReagentQubit dsDNA HS Assay KitThermo Fisher ScientificCatalog #Q32851
Набор для очистки продукта:
ReagentAMPure XP Beads (AXP)Beckman CoulterCatalog #AXP
А также:
  • DNA Control Sample (DCS)
  • Концентрированный этанол (для приготовления раствора 80%)
  • Безнуклеазная вода

Оборудование:
  • Флуориметр Qubit 4.0
  • Амплификатор
  • Центрифуга
  • Микроцентрифуга
  • Вортекс
  • Магнитный штатив на 1.5 или 0.2 мл в зависимости от объема
  • Дозаторы объемов 2, 10, 20, 100, 1000 μl
  • Холодный штатив

Расходные материалы:
  • Микропробирки 1.5 мл или 0.2 мл
  • Тонкостенные пробирки на 0.5 мл без делений для измерений концентрации на флуориметре
  • Наконечники для дозаторов 2, 10, 20, 100, 1000 μl

Note
Чтобы не ломались длинные фрагменты gDNA, можно использовать наконечники с широким носиком для пипетирования.

Разморозьте AMPure XP Beads (AXP) и DNA Control Sample (DCS) до комнатной температуре и перемешайте на вортексе

Note
AMPure XP Beads (AXP) можно оставить при комнатной температуре. DNA Control Sample (DCS) поставить на лед.

Подготовьте NEBNext FFPE DNA Repair Mix и NEBNext Ultra II End Repair / dA-tailing Module в соответствии с рекомендациями производителя

Note
  • Рекомендуется размораживать все реагенты на льду
  • НЕ рекомендуется перемешивать энзимы FFPE DNA Repair Mix или Ultra II End Prep Enzyme Mix на вортексе. Можно перемешивать переворачиванием или встряхиванием.
  • Наоборот, буферы имеют тенденцию к образованию осадка. Нагрейте растворы до комнатной температуры и пипетируйте несколько раз до растворения осадка, затем встряхните на вортексе в течение 30 сек
  • Перед первым открыванием пробирок с энзимами и буферами в течении дня рекомендуется делать сброс капель на микро-центрифуге
  • Буфер FFPE DNA Repair Buffer может приобрести слегка желтый оттенок, это нормально

Растворите контрольный образец ДНК (DCS) добавив Amount105 µL Elution Buffer (EB) прямо в пробирку DCS

Note
  • Одной пробирки DCS хватает на 140 образцов. Остаток можно хранить при -20°C в морозильной камере.
  • Рекомендуется использовать DCS для положительного контроля при подготовке библиотек. Однако, этот шаг можно пропустить и использовать вместо него дополнительные Amount1 µL ДНК образца.


Подготовьте образцы ДНК в чистых тонкостенных пробирках на Amount0.2 mL или 96-луночной плашке

Note
  • ! Объем ДНК на образец смотри на предыдущем шаге Go to


Доведите каждый образец до Amount11 µL безнуклеазной водой, аккуратно перемешайте пипетированием и коротко прокрутите на центрифуге
Если не используете DCS, увеличьте объем ДНК до 12,5 мкл

Для приготовления мастер-микса, рассчитайте необходимое количество реагентов и приготовьте смесь:

Note
Если число пробирок превышает 8, увеличить N на ошибку пипетирования.


ABC
РеагентОбъем на 1 пробиркуОбъем на N пробирок
Образец ДНК11 μl11 μl
Растворенный DCS1 μl1 * N
NEBNest FFPE DNA Repair Buffer0.875 μl0.875 * N
Utra II End-prep Reaction Buffer0.875 μl0.875 * N
Ultra II End-prep Enzyme Mix0.75 μl0.75 * N
NEBNext FFPE DNA Repair Mix0.5 μl0.5 * N
Всего15 μl
Расчет мастер-смеси для репарации и подготовки липких концов тотальной ДНК

Разлейте по Amount3 µL мастер-смеси в каждую пробирку с подготовленной ДНК

Note
Каждый раз после добавления пипетировать 10-20 раз


Сбросьте капли при помощи микро-центрифуги
Инкубируйте при Temperature20 °C в течение 15 мин и Temperature65 °C в течение 15 мин в термоциклере.
! Производитель рекомендует 5 мин каждого шага, но время необходимо увеличить для более эффективного лигирования

Программа для подготовки липких концов в термоциклере


30m
Очистка продуктов репарации
20m
Очистка продукта с помощью AMPure XP beads (AXP)
Ресуспендируйте AXP beads на вортексе
Добавьте Amount15 µL AXP в каждую пробирку с ДНК и перемешайте встряхиванием пробирки

Инкубируйте при комнатной температуре в течении Duration00:05:00 , периодически перемешивая встряхиванием пробирки

5m
Приготовьте свежий 80% этанол в безнуклеазной воде исходя из Amount400 µL на образец с небольшим запасом

Прокрутите пробирки с образцами на центрифуге и поставьте на магнитный штатив. Удалите супернатант.
Не снимая пробирки с магнитного штатива, промойте пробирки Amount200 µL свежеприготовленного этанола не задевая магнитные частицы. Удалите спирт пипеткой. Если задели магнитные частицы, подождите, пока они осядут на магнит и удалите спирт.

Повторите промывку.
Коротко прокрутите на микроцентрифуге и поставьте обратно на магнитный штатив. Дайте осесть частицам на магнит и удалите остатки этанола.
Просушите Duration00:00:30 , но не пересушивайте до растрескивания.

30s
Снимите пробирки с магнитного штатива и ресуспендируйте магниты в Amount8 µL безнуклеазной воды. Если дозатор не точный, рекомендуется смыватьAmount10 µL воды. Инкубируйте Duration00:05:00 для растворения ДНК.
5m
Поставьте пробирки на магнитный штатив и дайте частицам осесть на магнит.
Отберите Amount7.5 µL элюата в чистую пробирку на Amount1.5 mL .
При приготовлении более чем 1 образца перенести в пробирки на Amount0.2 mL .


Note
Полученные образы можно оставить в холодильнике на ночь



Лигирование баркодов
1h
ОБОРУДОВАНИЕ И РЕАКТИВЫ:

Реактивы:
ReagentNative Barcoding Kit 24 V14 (SQK-NBD114.24)Oxford Nanopore TechnologiesCatalog #SQK-NBD114.24
ReagentEDTA disodium dihydrateAbblisCatalog #AB1011793
ReagentNEB Blunt/TA Ligase Master Mix (M0367)

Набор для флуориметра:
ReagentQubit dsDNA HS Assay KitThermo Fisher ScientificCatalog #Q32851
Набор для очистки продукта:
ReagentAMPure XP Beads (AXP)Beckman CoulterCatalog #AXP

А также:
  • DNA Control Sample (DCS)
  • Концентрированный этанол (для приготовления раствора 80%)
  • Безнуклеазная вода

Оборудование:
  • Флуориметр Qubit 4.0
  • Амплификатор
  • Центрифуга
  • Микроцентрифуга
  • Вортекс
  • Ротатор
  • Магнитный штатив на 1.5 или 0.2 мл в зависимости от объема
  • Дозаторы объемов 2, 10, 20, 100, 1000 μl
  • Холодный штатив

Расходные материалы:
  • Микропробирки 1.5 мл или 0.2 мл
  • Тонкостенные пробирки на 0.5 мл без делений для измерений концентрации на флуориметре
  • Наконечники для дозаторов 2, 10, 20, 100, 1000 μl

ABC
НомерПрямаяОбратная
NB01CACAAAGACACCGACAACTTTCTTAAGAAAGTTGTCGGTGTCTTTGTG
NB02ACAGACGACTACAAACGGAATCGATCGATTCCGTTTGTAGTCGTCTGT
NB03CCTGGTAACTGGGACACAAGACTCGAGTCTTGTGTCCCAGTTACCAGG
NB04TAGGGAAACACGATAGAATCCGAATTCGGATTCTATCGTGTTTCCCTA
NB05AAGGTTACACAAACCCTGGACAAGCTTGTCCAGGGTTTGTGTAACCTT
NB06GACTACTTTCTGCCTTTGCGAGAATTCTCGCAAAGGCAGAAAGTAGTC
NB07AAGGATTCATTCCCACGGTAACACGTGTTACCGTGGGAATGAATCCTT
NB08ACGTAACTTGGTTTGTTCCCTGAATTCAGGGAACAAACCAAGTTACGT
NB09AACCAAGACTCGCTGTGCCTAGTTAACTAGGCACAGCGAGTCTTGGTT
NB10GAGAGGACAAAGGTTTCAACGCTTAAGCGTTGAAACCTTTGTCCTCTC
NB11TCCATTCCCTCCGATAGATGAAACGTTTCATCTATCGGAGGGAATGGA
NB12TCCGATTCTGCTTCTTTCTACCTGCAGGTAGAAAGAAGCAGAATCGGA
NB13AGAACGACTTCCATACTCGTGTGATCACACGAGTATGGAAGTCGTTCT
NB14AACGAGTCTCTTGGGACCCATAGATCTATGGGTCCCAAGAGACTCGTT
NB15AGGTCTACCTCGCTAACACCACTGCAGTGGTGTTAGCGAGGTAGACCT
NB16CGTCAACTGACAGTGGTTCGTACTAGTACGAACCACTGTCAGTTGACG
NB17ACCCTCCAGGAAAGTACCTCTGATATCAGAGGTACTTTCCTGGAGGGT
NB18CCAAACCCAACAACCTAGATAGGCGCCTATCTAGGTTGTTGGGTTTGG
NB19GTTCCTCGTGCAGTGTCAAGAGATATCTCTTGACACTGCACGAGGAAC
NB20TTGCGTCCTGTTACGAGAACTCATATGAGTTCTCGTAACAGGACGCAA
NB21GAGCCTCTCATTGTCCGTTCTCTATAGAGAACGGACAATGAGAGGCTC
NB22ACCACTGCCATGTATCAAAGTACGCGTACTTTGATACATGGCAGTGGT
NB23CTTACTACCCAGTGAACCTCCTCGCGAGGAGGTTCACTGGGTAGTAAG
NB24GCATAGTTCTGCATGATGGGTTAGCTAACCCATCATGCAGAACTATGC
Расшифровка последовательностей баркодов из набора Native Barcoding Kit 24 v14

Подготовьте NEB Blunt/TA Ligase Master Mix
Note
  • Разморозьте реактивы при комнатной температуре
  • Сбросьте капли с пробирок на микро-центрифуге
  • Перемешайте пипетированием 10 раз


Разморозьте и перемешайте на вортексе EDTA. Сбросьте капли на центрфуге и поставьте на холодный штатив.
Разморозьте баркоды (NB01-24) по числу образцов, перемешайте, сбросьте капли на центрифуге и поместите на холодный штатив.

Запишите уникальные баркоды для каждого образца, которые будут запущены вместе в одной проточной ячейке. В одном запуске можно закодировать до 24 образцов.
Note
! Используется по одному баркоду на образец (нельзя использовать по два баркода с разных сторон).

В пробирки на Amount0.2 mL добавьте реактивы в следующем порядке и тщательно перемешайте подготовленную смесь пипетированием:

AB
РеактивОбъем
ДНК, подготовленная на предыдущем этапе7.5 μl
Native Barcode (NB01-24)2.5 μl
Blunt/TA Ligase Master Mix10 μl
Всего20 μl

Инкубируйте при комнатной температуре 20 минут. Или оставьте на Temperature+4 °C на ночь.
Есть рекомендации по продлению лигирования до одного часа.

20m
Добавьте соответствующий Вашему набору объем EDTA в каждую пробирку, тщательно перемешайте и сбросьте капли на центрифуге. Избегайте избытка ЭДТА и следите за тем, чтобы в пробирке с ЭДТА не образовывались кристаллы

Note

AB
Цвет крышки пробирки EDTAОбъем EDTA на пробирку
Бесцветная крышка2 μl
Синяя крышка4 μl


Пулирование (сливание баркодированных образцов вместе). Перенесите все баркодированные образцы в одну пробирку на 1.5 мл. Объем каждого образца и результирующий объем показаны в таблице:

AОбъем на образецНа 6 образцовНа 12 образцовНа 24 образца
Общий объем образца для EDTA с бесцветной крышкой22 μl 132 μl 264 μl 528 μl
Общий объем образца для EDTA с синей крышкой24 μl 144 μl 288 μl 576 μl


Очистка продукта с помощью AMPure XP beads (AXP)
Ресуспендируйте AMPure XP Beads (AXP) на вортексе
Добавьте 0.4X AMPure XP Beads (AXP) в пулированную библиотеку и перемешайте пипетированием
Инкубируйте с перемешиванием на ротаторе 10 мин при комнатной температуре
Сделайте 2 мл раствора свежего 80% спирта на безнуклеазной воде

Сбросьте капли в пробирке с библиотекой на центрифуге и поместите на ее магнитный штатив

Подержите на магнитном штативе до достижения прозрачного раствора и удалите супернатант
Не снимая с магнитного штатива, добавьте Amount700 µL свежеприготовленного 80% спирта. Удалите спирт.
Note
Спирт добавляется не задевая магнитные частицы на стенках пробирки. Если частицы взмутились, подождите пока они осядут на магнит, затем удалите спирт.


Повторите предыдущий шаг.
Прокрутите на центрифуге для сброса капель и магнитов, поместите обратно на магнитный штатив, удалите остатки спирта и дайте просохнуть около Duration00:00:30 не давая пересохнуть до трещин.
Если за 30 сек не перестало блестеть, дождаться того, чтобы осадок перестал блестеть, но не растрескался.
30s
Снимите пробирку со штатива и добавьте Amount35 µL безнуклеазной воды. Перемешайте легкими щелчками

Инкубируйте Duration00:10:00 при 37°C, каждые Duration00:02:00 встряхивайте щелчками для улучшения растворения ДНК

10m
Поставьте пробирку на магнитный штатив до достижения раствором прозрачности

Отберите и перенесите Amount30 µL элюата в новую 0.2 мл пробирку (в протоколе пробирка 1.5 мл, однако мы уменьшили объем пробирки для улучшения качества промывки на следующем этапе)

Лигирование адаптеров
50m
Реактивы:
ReagentNative Barcoding Kit 24 V14 (SQK-NBD114.24)Oxford Nanopore TechnologiesCatalog #SQK-NBD114.24
ReagentEDTA disodium dihydrateAbblisCatalog #AB1011793
ReagentNEBNext Quick Ligation ModuleNew England BiolabsCatalog #E6056

Набор для флуориметра:
ReagentQubit dsDNA HS Assay KitThermo Fisher ScientificCatalog #Q32851
Набор для очистки продукта:
ReagentAMPure XP Beads (AXP)Beckman CoulterCatalog #AXP

А также:
  • DNA Control Sample (DCS)
  • Концентрированный этанол (для приготовления раствора 80%)
  • Безнуклеазная вода

Оборудование:
  • Флуориметр Qubit 4.0
  • Амплификатор
  • Центрифуга
  • Микроцентрифуга
  • Вортекс
  • Ротатор
  • Магнитный штатив на 1.5 или 0.2 мл в зависимости от объема
  • Дозаторы объемов 2, 10, 20, 100, 1000 μl
  • Холодный штатив

Расходные материалы:
  • Микропробирки 1.5 мл или 0.2 мл
  • Тонкостенные пробирки на 0.5 мл без делений для измерений концентрации на флуориметре
  • Наконечники для дозаторов 2, 10, 20, 100, 1000 μl

Note
  • Адаптер с моторным белком (The native adapter NA) не взаимозаменяем с другими адаптерами для секвенирования
  • В зависимости от буфера (LFB or SFB), очистка после лигирования адаптера предназначена для обогащения библиотек фрагментами длиннее 3 kb или очистке без селекции длины фрагмента:
  1. Для обогащения библиотек фрагментами 3 kb или длиннее, используйте Long Fragment Buffer (LFB)
  2. Для сохранения фрагментов всех длин используйте Short Fragment Buffer (SFB)

Подготовьте реактивы NEBNext Quick Ligation Reaction Module согласно инструкции производителя и поставьте на холодный штатив:
  • Long Fragment Buffer (LFB)
  • Short Fragment Buffer (SFB)
  • Elution Buffer (EB)
  • Native Adapter (NA)
  • NEBNext Quick Ligation Reaction Buffer (5x)
Note
  1. Разморозьте реактивы при комнатной температуре
  2. Сбросьте жидкость с крышек коротким центрифугированием
  3. Перемешайте реактивы пипетированием
  4. НЕ рекомендуется встряхивать на вортексе фермент Quick T4 DNA Ligase
  5. NEBNext Quick Ligation Reaction Buffer (5x) может иметь осадок. Дайте раствору достигнуть комнатной температуры и пипетируйте буфер несколько раз, чтобы растворить осадок, встряхните на вортексе несколько секунд чтобы убедиться, что раствор полностью перемешался
  6. Разморозьте Long Fragment Buffer (LFB) или Short Fragment Buffer (SFB) до комнатной температуры, перемешайте на вортексе. Потом сбросьте жидкость с крышки на центрифуге и поставьте реактивы на холодный штатив.
  7. Для увеличения концентрации длинных фрагментов (>3kb) используйте Long Fragment Buffer (LFB)
Для того чтобы сохранить фрагменты всех длинн используйте Short Fragment Buffer (SFB)


В пробирке на 1.5 мл подготовьте реакционную смесь в следующем порядке:
AB
РеактивОбъем
Образец ДНК (пулированный), подготовленный на предыдущем этапе30 μl
Native Adapter (NA)5 μl
NEBNext Quick Ligation Reaction Buffer (5X)10 μl
Quick T4 DNA Ligase5 μl
Всего50 μl

Хорошо перемешайте реакционную смесь аккуратным пипетированием и сбросьте капли коротким центрифугированием
Инкубируйте при комнатной температуре от Duration00:20:00 до Duration01:00:00

1h 20m
Очистка продукта с помощью AMPure XP beads (AXP) с буферами фрагментов вместо спирта

Note
! На следующих шагах очистки вместо спирта используется Long Fragment Buffer (LFB) или Short Fragment Buffer (SFB)

Ресуспендируйте AMPure XP Beads (AXP) на вортексе
Добавьте Amount20 µL AMPure XP Beads (AXP) и перемешайте пипетированием
Инкубируйте Duration00:10:00 с периодическим перемешиванием пощелкиванием
10m
Сбросьте капли коротким центрифугированием и поставьте пробирку на магнитный штатив. Не снимая пробирку со штатива удалите супернатант
Промойте магнитные частицы в Amount125 µL Long Fragment Buffer (LFB) или Short Fragment Buffer (SFB). Снимите пробирку с магнитного штатива и встряхните, сбросьте капли на центрифуге, верните пробирку на магнитный штатив и дайте частицам осесть на магнит
Повторите предыдущий шаг
Снимите пробирку с магнитного штатива и добавьте Amount15 µL Elution Buffer (EB), после чего встряхните
Сбросьте центрифугированием и инкубируйте Duration00:10:00 при 37°C. Каждые Duration00:02:00 встряхивайте содержимое пробирки легким щелчком для облегчения смыва ДНК с частиц
12m
Оставьте на магнитном штативе пока элюат не станет прозрачным
Отберите и перенести Amount15 µL элюата, содержащего ДНК библиотеки, в 1.5 ml пробирку. Пробирку с микрочастицами можно выкинуть.
Подготовленная библиотека используется для загрузки в проточную ячейку. Библиотеку до загрузки храните на холодном штативе или в холодильнике.

Note
Рекомендации по хранению библиотек:
  • Рекомендуется хранить библиотеки в пробирках при 4°C в течении короткого времени
  • Для длительного хранения (более 3 месяцев) рекомендуется хранить библиотеки при -80°C

Рекомендация по разведению:
  • Если концентрация библиотеки позволяет, ее можно развести в Elution Buffer (EB) для разделения на несколько ячеек
  • В зависимости от того, на какое количество ячеек будут разделены библиотеки, может понадобиться больше Elution Buffer (EB), чем доступно в наборе



Измерьте концентрацию на флуориметре
Note
! Если концентрация библиотеки ниже указанных значений, загрузите всю библиотеку
Рекомендуется загружать следующее количество материала:
  1. Для хорошего выхода симплексных данных, загружайте 35-50 fmol финальной библиотеки (в этом случае загрузка пор достигнет >95%)
  2. Для дуплексных данных, загружайте 10-20 fmol финальной библиотеки. Загрузка большей, чем 20 fmol концентрации, может уменьшить частоту захвата дуплексных ридов
  3. Формула расчета загрузки на сайте Nanoporе

Прайминг ячейки и загрузка библиотек
Основное оборудование:
Equipment
SpotON Flow Cell
NAME
Проточная ячейка для нанопорового секвенирования R10.4.1
TYPE
FLO-MIN114
BRAND
FLO-MIN114
SKU
Download 296f563441c36550297ff29aefe5cefc.Jpg

Equipment
MinION
NAME
Sequencer
TYPE
Oxford Nanopore Technologies
BRAND
MinION 1B / MinION 1C
SKU
Реактивы:
ReagentNative Barcoding Kit 24 V14 (SQK-NBD114.24)Oxford Nanopore TechnologiesCatalog #SQK-NBD114.24
А именно из этого набора:
  • Flow Cell Flush (FCF)
  • Flow Cell Tether (FCT)
  • Library Solution (LIS)
  • Library Beads (LIB)
  • Sequencing Buffer (SB)
  • Bovine Serum Albumin (BSA)

Note
  • Для большинства экспериментов рекомендуется использовать Library Beads (LIB) для загрузки библиотек на ячейку (и в нашем случае)
  • Однако, если вы ранее использовали воду для загрузки библиотек, вам необходимо использовать Library Solution (LIS) вместо воды
  • Некоторые пользователи отмечают, что густые библиотеки лучше загружаются без Library Beads (LIB)
  • Для оптимальной работы секвенатора рекомендуется добавить Bovine Serum Albumin (BSA) в финальной концентрации в миксе 0.2 mg/ml
  • Не рекомендуется использовать другие типы альбумина, например рекомбинантный человеческий альбумин

А также:
  • Безнуклеазная вода
  • Дозаторы объемов 2, 10, 20, 100, 1000 μl
  • Вортекс
  • Микроцентрифуга
  • Холодный штатив

Расходные материалы:
  • Микропробирки 1.5 мл или 0.2 мл
  • Наконечники для дозаторов 2, 10, 20, 100, 1000 μl
Рекомендуется посмотреть видео демонстрации прайминга и загрузки ячейки перед первым использованием прибора на сайте Nanopore

Note
  • При необходимости проведите проверку ячейки, чтобы получить представление о доступных порах перед загрузкой библиотек
  • Инструкция по проверке ячейки на сайте Nanopore

Подготовьте концентрацию библиотеки 35-50 fmol для симплексных данных или 10-20 fmol для дуплексных данных в объеме Amount12 µL

ABCD
C (lib), ng/mklM, fmolV(amp)=20/MV(EB)=12-V(amp)
38.978.70.2511.75
17.836.10.5511.45
C (lib) - концентрация ДНК в библиотеке
V (lib) - объем библиотеки, который нужно взять для разведения
V (EB) - объем Elution Buffer
Для расчета молярной массы М используйте в мобильном приложении NEBCalculator или в браузерной версии NEBCalculator

Разморозьте Sequencing Buffer (SB), Library Beads (LIB) или Library Solution (LIS) (см. примечание в начале раздела), Flow Cell Tether (FCT) и одну пробирку Flow Cell Flush (FCF) при комнатной температуре, размешайте на вортексе, сбросьте на центрифуге и поставьте на холодный штатив

Для приготовления прайминговой смеси с BSA, смешайте Flow Cell Flush (FCF) и Flow Cell Tether (FCT) как указано ниже:

Note
Производитель на этапе перехода от формата одноразовых пробирок к формату многоразовых флаконов с реагентами. Необходимо следовать инструкциям, соответствующим Вашему формату набора.

Пробирочный формат прайминговой смеси. Добавьте Amount5 µL Bovine Serum Albumin (BSA) концентрации 50 mg/ml и Amount30 µL Flow Cell Tether (FCT) непосредственно в пробирку с Flow Cell Flush (FCF).
Флаконный формат. В соответствующей пробирке смешайте реактивы по схеме:
AB
РеактивОбъем
Flow Cell Flush (FCF)1 170
Bovine Serum Albumin (BSA) в концентрации 50 мг/мл5 μl
Flow Cell Tether (FCT)30 μl
Общий объем1 205 μl
В протоколах без Bovine Serum Albumin (BSA), объем FCF = 1 175 мкл (если используется пробирочный формат, то объемом BSA пренебрегаем)

Откройте крышку секвенатора MinION или GridION и задвиньте проточную ячейку до щелчка. Прижмите ячейку, чтобы убедиться в хорошем электрическом контакте.

Сдвиньте крышку праймингового порта по часовой стрелке. После открытия порта проверьте наличие мелких пузырьков воздуха под крышкой. Вытяните пипеткой небольшое количество буфера, чтобы удалить пузырьки из праймингового порта следующим образом:
  1. Установите пипетку объемом 1000 μl на 200 μl
  2. Поставьте пипетку на прайминговый порт
  3. Вращайте счетчик объема пипетки на увеличение пока счетчик не покажет 220-230 μl, чтобы отобрать 20-30 μl буфера, или пока не появится небольшое количество желтого буфера в кончике пипетки
  4. Проверьте визуально наличие буфера на протяжении от праймингового порта до сенсорной панели пор

Note
Будьте осторожны при удалении буфера из проточной ячейки. Не удаляйте более чем 20-30 μl и убедитесь, что все поры покрыты буфером. Пузырьки воздуха необратимо повреждают поры.

Загрузите Amount800 µL прайминговой смеси через прайминговый порт, стараясь не допустить попадания воздуха. Подождите 5 минут. В это время подготовьте библиотеку к загрузке, следуя инструкции:

Тщательно размешать пипетированием содержимое Library Beads (LIB)
Note
Library Beads (LIB) содержит суспензию шариков, они очень быстро оседают, поэтому
! очень важно перемешивать их непосредственно перед использованием

В новой пробирке объемом Amount1.5 mL подготовить библиотеку следующим образом:
РеагентОбъем на одну ячейку
Реагентб
Sequencing Buffer (SB)37.5 μl
LIB ! размешать непосредственно перед использованием25.5 μl
Библиотека ДНК12 μl
Всего75 μl


Аккуратно отогните крышку SpotON sample port
Загрузите через каплю Amount200 µL прайминговой смеси в прайминговый порт (! не в SpotON sample port), избегая попадания пузырьков

При правильной загрузке наблюдается выделение и обратное всасывание жидкости через SpotON sample port
Перемешайте библиотеку пипетированием прямо перед загрузкой

Добавьте Amount75 µL подготовленной библиотеки в ячейку через каплю в SpotON sample port

плотно закройте прайминговый порт и SpotON порт, отберите примерно 1000 мкл жидкости из порта для отходов
Запуск секвенирования
Установите ячейку в секвенатор до упора, убедитесь в примыкании вертикальных контактов
Запустите MinKnow, ячейка определится автоматически
В меню Start выбрать кнопку Sequencing
Выбрать на последующих вкладках название и место записи результатов секвенирования, соответствующий кит для подготовки библиотек, быстрый базеколлинг Fast basecalling и запустить секвенирование
После запуска проверить состояние ячейки
! хорошо работающая ячейка в программе залита ярко-зеленым полем
! увеличение площади темно-зеленого поля говорит об увеличении числа не секвенирующих доступных пор
! увеличение площади голубого поля говорит об увеличении числа недоступных ячеек
При возникновении указанных проблем нужно
1. Остановить секвенирование
2. Вынуть и вставить заново ячейку
3. Проверить температуру прибора: двойным щелчком по строке с обзором секвенирования вызвать обзорный экран, справа в середине будет отображена температура, она не должна превышать Temperature36 °C

Использованные ресурсы
Данный протокол содержит более или менее дословный перевод протоколов и инструкций, размещенных на сайте Nanopore. Текст был также дополнен опытом нашей работы в рамках наших исследовательских задач.
Protocol references
Gardes M. & Bruns T.D. (1993) ITS primers with enhanced specifity for Basidiomycetes: application to identification of mycorrhizae and rusts. Molecular Ecology 2: 113–118.
Tedersoo, L., Bahram, M., Zinger, L., Nilsson, R. H., Kennedy, P. G., Yang, T., Anslan, S., & Mikryukov, V. (2022). Best practices in metabarcoding of fungi: From experimental design to results. Molecular Ecology, 31, 2769–2795. https://doi.org/10.1111/mec.16460.
White, T.J., Bruns, T.D., Lee, S.B. and Taylor, J.W. (1990) Amplification and Direct Sequencing of Fungal Ribosomal RNA Genes for Phylogenetics. In: Innis, M.A., Gelfand, D.H., Sninsky, J.J. and White, T.J., Eds., PCR Protocols: A Guide to Methods and Applications, Academic Press, New York, 315-322. http://dx.doi.org/10.1016/B978-0-12-372180-8.50042-1
Taberlet, P., Bonin, A., Zinger, L. and Coissac, E., 2018. Environmental DNA: For biodiversity research and monitoring. Oxford University Press.




Citations
Step 3
Taberlet, P., Bonin, A., Zinger, L., & Coissac, E.. Environmental DNA: For biodiversity research and monitoring
https://doi.org/10.1093/oso/9780198767220.001.0001